Instructivo envío de muestras

• Sangre entera: recolectar en tubo con anticoagulante, preferentemente tapa violeta (EDTA).
• Suero: recolectar en tubos sin aditivos, con separador de suero o con activador de coágulo.
Identificar cada tubo de forma clara con número de muestra o nombre del paciente.
• Verificar que los tubos estén bien cerrados antes del envío.
• En transportes prolongados (más de 48 h) o en días de altas temperaturas, enviar las muestras en conservadora con refrigerantes (packs fríos), evitando el contacto directo del hielo con los tubos. En estos casos, se recomienda separar el suero en origen.
• No congelar las muestras, salvo indicación específica del laboratorio.

• Los fetos enviados para necropsia deben mantenerse refrigerados, nunca congelados.
• Colocar los fetos en una bolsa plástica impermeable y bien cerrada.
• Introducir esa bolsa dentro de una segunda bolsa impermeable, colocando en su interior material absorbente (paños absorbentes/diario/papel).
• Colocar una etiqueta en la bolsa más externa, identificando claramente el nombre del veterinario.
• La historia clínica y planilla de envío deben colocarse en una bolsa aparte, fuera del contacto con el cadáver, para evitar que se humedezcan o dañen.
• Mantener el feto refrigerado (2–8 °C) durante todo el transporte (conservadora con packs fríos).
• Es muy importante, siempre que sea posible, incluir la placenta o fragmentos de placenta en una bolsa aparte, ya que aporta información clave para el diagnóstico de abortos.
• En caso de abortos, para reducir el peso, puede removerse las extremidades antes de su colocación en la bolsa.
• Siempre enviar historia clínica del caso.

• Enviar aprox. 50 g de materia fecal en un recipiente hermético (frasco o pote a prueba de derrames).
Mantener la muestra refrigerada (2–8 °C) desde la toma y durante el transporte.
• Si se usan bolsas plásticas, procurar que contengan la menor cantidad de aire posible antes de cerrarlas, para reducir la oxidación y el riesgo de rotura.
• Evitar “pooles” de muestras. Es recomendable tomar las muestras directamente desde el animal y evitar el suelo en casos de animales de campo.

• La mayoría de los fluidos deben recolectarse de la manera más estéril posible y colocarse en un recipiente estéril y hermético.
• Mantener en temperatura de refrigeración luego de la recolección y durante el transporte.

• Raspar el borde de la lesión abarcando un mínimo de un área de 3X3 cm.
• Enviar a temperatura ambiente.

Bacteriología
• En caso de ser posible, se prefiere evitar el uso de hisopados por sobre tejido afectado, fluidos o materia fecal. Si se utilizan hisopos, enviarlos utilizando sistemas de transporte para bacteriología. Para aumentar las chances de diagnóstico, se recomienda emplearse múltiples hisopos. Si se sospechan bacterias anaerobias, utilizar un sistema de transporte diseñado para anaerobios estrictos.
• Los hisopos secos no son apropiados para el cultivo bacteriano y serán rechazados.

Diagnóstico molecular (PCR)
• Los hisopos deben ser sintéticos y enviarse en tubos estériles. El medio de transporte es específico para cada prueba; consulte la información de cada ensayo para más detalles. Tenga en cuenta que las pruebas moleculares no pueden realizarse en tubos que contengan medios gelificados o tipo gel.
• Mantener en temperatura de refrigeración luego de la recolección y durante el transporte.

Tejido (fijado en formol 10%)
• Las muestras de tejido fijado enviadas para histopatología deben ser representativas de la lesión (si se observa). La(s) muestra(s) debe(n) enviarse en formalina bufferada neutra al 10%, y la relación de volumen formalina/tejido debe ser de al menos 10 partes de formalina por 1 parte de tejido.
• En necropsias a campo se debe tomar un conjunto completo y representativo de tejidos, además de aquellos que se observen macroscópicamente alterados. Se cobra por caso y no por número de tejidos remitidos, y pueden pasarse por alto lesiones significativas si los tejidos parecen normales a la inspección macroscópica.
• Las muestras gastrointestinales deben enjuagarse suavemente con formalina antes de su envío en formalina fresca.
• Las muestras óseas o las muestras de más de 10 cm de diámetro requerirán muestreo adicional, procesamiento especial y más tiempo antes de su evaluación histológica.

• Como mínimo enviar 10 mL de orina en un recipiente a prueba de derrames. La cistocentesis es el método de recolección recomendado.
• Mantener en temperatura de refrigeración luego de la recolección y durante el transporte.